细胞培养常见问题及对策

1 冷冻管应如何解冻？

取出冷冻管后，须立即放入 37 C 水槽中快速解冻，轻摇冷冻管使其在 1 分钟内全部融化，并注意水面不可超过冷冻管盖沿，否则易发生污染情形。另冷冻管由液氮桶中取出解冻时，必须注意安全，预防冷冻管之爆裂。

2 细胞冷冻管解冻培养时，是否应马上去除 DMSO？

除少数特别注明对 DMSO 敏感之细胞外，绝大部分细胞株（包括悬浮性细胞），在解冻之后，应直接放入含有 10-15ml 新鲜培养基之培养角瓶中，待隔天再置换新鲜培养基以去除 DMSO  即可，如此可避免大部分解冻后细胞无法生长或贴附之问题。

3 可否使用与原先培养条件不同之培养基？

不能。每一细胞株均有其特定使用且已适应之细胞培养基，若骤然使用和原先提供之培养条件不同之培养基，细胞大都无法立即适应，造成细胞无法存活。

4 可否使用与原先培养条件不同之血清种类？

不能。血清是细胞培养上一个极为重要的营养来源，所以血清的种类和品质对于细胞的生长会产生极大的影响。来自不同物种的血清，在一些物质或分子的量或内容物上都有所不同，血清使用错误常会造成细胞无法存活。

5 何谓 FBS, FCS, CS, HS ?

FBS (fetal bovine serum) 和 FCS (fetal calf serum)  是相同的意思，两者都是指胎牛血清， FCS 乃错误的使用字眼，请不要再使用。CS (calf serum)  则是指小牛血清。HS (horseserum)  则是指马血清。

6 培养细胞时应使用 5 %或 10% CO2？或根本没有影响？

一般培养基中大都使用 HCO3-/CO32-/H+ 作为 pH 的缓冲系统，而培养基中 NaHCO3 的含量将决定细胞培养时应使用的 CO2 浓度。当培养基中NaHCO3 含量为每公升 3.7 g 时，细胞培养时应使用 10% CO2；当培养基中NaHCO3 为每公升 1.5 g 时，则应使用 5% CO2 培养细胞。

7 何时须更换培养基？

视细胞生长密度而定，或遵照细胞株基本数据上之更换时间，按时更换培养基即可。

8 培养基中是否须添加抗生素？

除于特殊筛选系统中外，一般正常培养状态下，培养基中不应添加任何抗生素。

9 附着性细胞继代时所使用之 trypsin-EDTA 浓度？应如何处理？

一般使用之 trypsin-EDTA 浓度为 0.05% trypsin-0.53m MEDTA.4 Na。第一次开瓶后应立即少量分装于无菌试管中，保存于–20 C，避免反复冷冻解冻造成 trypsin 之活性降低，并可减少污染之机会。

10 悬浮性细胞应如何继代处理？

一般仅需持续加入新鲜培养基于原培养角瓶中，稀释细胞浓度即可，若培养液太多时，可将培养角瓶口端稍微抬高，直到无法容纳为止。分瓶时取出一部份含细胞之培养液至另一新的培养角瓶，加入新鲜培养基稀释至适当浓度， 重复前述步骤即可。

11 欲将一般动物细胞离心下来，其离心速率应为多少转速？

欲回收动物细胞，其离心速率一般为 300xg (约 1,000rpm)，5 – 10 分钟，过高之转速，将造成细胞死亡。

12 细胞之接种密度为何？

依照细胞株基本数据上之接种密度或稀释分盘之比例接种即可。细胞数太少或稀释的太多亦是造成细胞无法生长之一重要原因。

13 细胞冷冻培养基之成份为何？

动物细胞冷冻保存时最常使用的冷冻培养基是含 5 – 10% DMSO (dimethyl

sulfoxide) 和 90 – 95 %原来细胞生长用之新鲜培养基均匀混合之。注意：由于

DMSO 稀释时会放出大量热能，故不可将 DMSO 直接加入细胞液中，必须使用前先行配制完成。

14 DMSO 之等级和无菌过滤之方式为何？

冷冻保存使用之 DMSO 等级，必须为 Tissue culture grade 之 DMSO (如Sigma D2650)，其本身即为无菌状况，第一次开瓶后应立即少量分装于无菌试管中，保存于 4 C，避免反复冷冻解冻造成 DMSO 之裂解而释出有害物质，并可减少污染之机会。若要过滤 DMSO，则须使用耐 DMSO 之 Nylon 材质滤膜。

15 冷冻保存细胞之方法？

冷冻保存方法一：冷冻管置于 4 C 30~60 分钟 → (-20 C 30 分钟) → -80 C16~18 小时(或隔夜) → 氮槽 vapor phase 长期储存。

冷冻保存方法二: 冷冻管置于已设定程序之可程序降温机中每分钟降 1-3 C 至–80 C  以下， 再放入液氮槽 vapor phase 长期储存。*-20 C 不可超过 1 小时，以防止冰晶过大，造成细胞大量死亡，亦可跳过此步骤直接放入-80 C 冰箱中，惟存活率稍微降低一些。

16 细胞欲冷冻保存时，细胞冷冻管内应有多少细胞浓度？

冷冻管内细胞数目一般为 1×106 cells/ml vial，融合瘤细胞则以 5×106 cells/ml vial 为宜。

17 应如何避免细胞污染？

细胞污染的种类可分成细菌、酵母菌、霉菌、病毒和霉浆菌。主要的污染原因为无菌操作技术不当、操作室环境不佳、污染之血清和污染之细胞等。严格无菌操作技术、清洁的环境、与品质良好之细胞来源和培养基配制是减低污染的好方法。

18 如果细胞发生微生物污染时，应如何处理？ 加入相应抗生素，直接灭菌后丢弃之。

19 支原体(mycoplasma) 污染的细胞， 是否能以肉眼观察出异状？

不能。除极有经验之专家外，大多数遭受支原体污染的细胞株，无法以其外观分辨之。

20 支原体污染会对细胞培养有何影响？

支原体污染几乎可影响所有细胞之生长参数，代谢及研究任一数据。故进行实验前，必须确认细胞为 mycoplasma-free，实验结果之数据方有意义。

        21 细胞株有支原体污染时， 该如何处理？ 

直接灭菌后丢弃，以避免污染其它细胞株。

22 CO2 培养箱之水盘如何保持清洁？

定期(至少每两周一次) 以无菌蒸馏水或无菌去离子水更换之。

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人乳腺上皮细胞基础培养基

Gibco™ Human Mammary Epithelial Cell Basal Medium (formerly ''''Medium 171''人乳腺上皮细胞基础培养基)

This medium contains essential and non-essential amino acids, vitamins, other organic compounds, trace minerals, and inorganic salts. It does not contain antibiotics, antimycotics, hormones, growth factors, or proteins. It is HEPES and bicarbonate buffered and designed for use in an incubator with an atmosphere of 5% CO2/95% air.

To support plating and long-term proliferation of normal human mammary epithelial cells, Human Mammary Epithelial Cell Basal Medium must be supplemented with Mammary Epithelial Growth Supplement (MEGS) (Cat. No. S0155). Each 5-mL bottle of MEGS contains all of the growth factors, hormones, and tissue extracts necessary for the culture of normal human mammary epithelial cells and is the correct amount of supplement for a 500 mL bottle of Human Mammary Epithelial Cell Basal Medium.

When a 500 mL bottle of medium is supplemented with MEGS, the final concentrations of the MEGS components in the supplemented medium are: BPE, 0.4% v/v; recombinant human insulin-like growth factor-I, 0.01 μg/mL; hydrocortisone, 0.5 μg/mL; and recombinant human epidermal growth factor, 3 ng/mL.

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透析型胎牛血清

透析型胎牛血清

Product Name: Fetal Bovine Serum (FBS), US Origin, Dialyzed.透析型胎牛血清

Product description: Most cells grown in culture require a serum component of the growth medium to maintain their proliferative capacity. While whole serum is permissible for routine purposes, studies involving nutritional parameters or incorporation of labeled material require that the constituent under study be removed from the serum. The most commonly used method for removal of these constituents is dialysis of whole serum.

Isotype: Cocktail.

Host Species: Alligator.

Purification: Affinity purified.